Material y Métodos
EXTRACCION DE LA MUESTRA Y ENVIO AL LABORATORIO
El lavado broncoalveolar (BAL), es una técnica que consiste en la introducción, en un determinado segmento pulmonar, de suero salino fisiológico y posterior aspiración del mismo.
A través del fibroscopio se introduce entre 100 y 200 ml de líquido, recogiéndose mediante aspiración entre 30 y 70% de la cantidad introducida, la cual se depositara en un recipiente de plástico tipo anaclín.
REGISTRO Y DESCRIPCIÓN MACROSCOPICA
Registra la llegada al laboratorio de la muestra con la petición colocado un número, este número será el distintivo de la muestra durante todo el proceso.
Es de gran utilidad la descripción macroscópica, anotando la cantidad y el aspecto de la muestra (color y consistencia).
PROCESADO DEL MATERIAL CITOPATOLÓGICO
PROCESADO DE LA MUESTRA
Después de haber realizado la descripción de la muestra se emperezara el procesado de esta.
Primero una cantitidad de al menos 20 ml. se centrifugara a 1500 R.P.M. durante 10 minutos. Después se retirara el sobrenádate y con el sedimento resultante, realizaremos y citocentrifugado con el Citospin a 1500 R.P.M durante 5 minutos.
FIJACIÓN DE LAS MUESTRAS
Después de realizar las maniobras de procesado, las preparaciones citopatológicas deben sé fijadas, para interrumpir los procesos de degradación que aparecen tras la muerte celular:
Alcohol etílico 96º
Utilizado en nuestro laboratorio.
Metanol 100º, Propanol 80º, Isopropanol 80º.
Las muestras que realizamos la COLORACIÓN DE MAY-GRUMWALD-GIEMSA se secaran al aire, no en alcohol.
TINCIÓN DE LAS MUESTRAS
Consisten aplicar diversas combinaciones de sustancias, colorantes a las extensiones previamente fijadas. El método mas recomendado es el Papanicolau.
Las coloraciones de rutina son de carácter policromo, permiten distinguir distintos matices (basofilia, anfofilia y eosinofilia) en las estructuras celulares a teñir.
COLORACIÓN PAPANICOLAOU
Utiliza tres colorantes:
-Hematoxilina de Harris (Colorea núcleos)
Filtrar a diario.
-Eosina alcohólica (E.A.)
Contiene verde luz, eosina y, marrón Bismark.
Naranja G (O.G. ,Colorante citoplasmático)
Tiñe de naranja los citoplasmas celulares que contienen queratina.
Procedimiento:
-Agua………………………….. 30 seg.
-Hematoxilina de Harris……….. 1 min.
-Agua…………………………... 1 min.
-Alcohol clorhídrico 1%............. 10 seg.
-Agua…………………………... 1 min.
-Alcohol 96º…………………… 10 seg.
-Alcohol 96º………………..…. 10 seg.
-Orange G……………………… 1 mim.
-Alcohol 96º……………….…... 10 seg.
-Alcohol 96º…………………….10 seg.
-EA 50 …...................................... 4 min.
-Alcohol 96º……………….…... 10 seg.
-Alcohol 96º…………………….10 seg.
-Alcohol absoluto………….…... 10 seg.
-Alcohol absoluto……………….10 seg.
-Xileno…………….……….…... 10 seg.
- Xileno………………………….10 seg.
-Montar
Resultados
-Núcleo: azul
-Citoplasmas: de verde a rojizo dependiendo de:
-Células secretoras o epitelio de revestimiento monoestratificado (verde suave).
-Células del epitelio de revestimiento poliestratificado (verde suave a rosa).
Células queratinizadas (rojo anaranjado)
COLORACIÓN DE MAY-GRUMWALD-GIEMSA
Denominada panóptica de Pappenhein, se realiza sobre material secado al aire
Proporciona una percepción de los finos detalles citológicos, sobre los que se sustenta él diagnostico de malignidad, con detalles citológicos (vacuolas, granos de mucina), componente de fondo (matriz mixoide, colágeno).
Utiliza:
-Eosina-azul de metileno en solución según May-Grunwald modificado. (Merk)
-Azul-eosina-azul metileno según Giemsa en solución. (Merk)
-Tampón Sorensen (fosfato monosódico monohidrato y fosfato disódico dihidrato).
Procedimiento:
- Eosina-azul de metileno en solución según May-Grunwald modificado. (Merk)………………………….……….. 3 min.
- Eosina-azul de metileno en solución según May-Grunwald modificado. (Merk) al 50% en tampón Sorensen……...3 min.
- Azul-eosina-azul metileno según Giemsa en solución. (Merk) al 10% en tampón Sorensen……………………….…15 min.
-Lavar en agua corriente.
- Tampón Sorensen (fosfato monosódico monohidrato y fosfato disódico dihidrato)………………………………………2 min.
-Alcohol 96º………………….… 10 seg.
-Alcohol 96º……………………. 10 seg.
-Alcohol absoluto………….….... 10 seg.
-Alcohol absoluto………………. 10 seg.
-Xileno…………….……….…... 10 seg.
-Xileno……………………….….10 seg.
-Montar
Resultados
-Gránulos neutofilos: rosa
-Gránulos eosinofilos: marrón rojizo.
-Nucleolo: rosa.
-Eritrocitos maduros: naranja rosados.
-Núcleos celulares: azul violáceo.
-Citoplasma: azul claro a rosa.
OTRAS TÉCNICAS:
TÉCNICAS DE INMUNOCITOQUIMICA
Fijadas en acetona o teñidas.
TÉCNICAS ESPECIALES
Tuberculosis
Zielh-Neelsen
Auramina- rodamina.
Asbestosis
Digestión con hipoclorito sodico.
Hongos
PAS
Plata metemamina.
Hemosiderofagos
Azul de Perls
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Centrifuga - fiogf49gjkf0d
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Material de la citocentrifuga - fiogf49gjkf0d
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Citocentrifuga - fiogf49gjkf0d
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Teñidor Automatico Papanicolaou - fiogf49gjkf0d
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Bateria de tinción de Giemsa - fiogf49gjkf0d
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