VI Congreso Virtual Hispanoamericano de Anatomía Patológica
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Pérdida de heterogosidad (LOH) y/o inestabilidad de microsatélites (MI) a nivel del cromosoma 10q en tumores neuroblásticos.

P Lázcoz , J Muñoz , M Nistal , A Pestaña , I Encío y JS Castresana

Departamento de Ciencias de la Salud.
Universidad Pública de Navarra.
Avenida de Barañáin s/n Pamplona,
31008 Navarra.

España
 Resumen
Introducción.
Los tumores neuroblásticos son los tumores sólidos extracraneales más frecuentes en la edad pediátrica. La amplificación de N-myc, la deleción del cromosoma 1p, la diploidía o tetraploidía, así como la edad (mayores de 1 año) son factores de mal pronóstico en neuroblastoma. Otras alteraciones genéticas son las deleciones en 11q y 14q, la trisomía de 17q, y la expresión de receptores de neurotrofinas.
El cromosoma 10q participa mediante deleciones en la génesis de otros tumores del sistema nervioso y en menor proporción, en neuroblastomas. Por ello hemos realizado una exploración detallada de 10q en las áreas donde se situan los principales genes supresores de tumores.

Material y métodos.
- DNA genómico extraído de 21 neuroblastomas así como de sangre de cada paciente (control negativo).
- Se realizó la técnica de PCR sobre DNA tumoral y DNA de sangre periférica de cada paciente para determinar la frecuencia de LOH y/o MI en 10q mediante la amplificación de los siguientes microsatélites:
o PTEN-CA: en el gen PTEN.
o D10S209 y D10S587: en el gen DMBT1.
o D10S214: en el gen MGMT
o D10S221, D10S597: en el gen MXI1.

Resultados.
Del total de los 21 pares sangre/tumor de neuroblastomas tan sólo fueron analizables entre 11 y 15 dependiendo del microsatélite estudiado. La frecuencia máxima de LOH se dio en PTEN-CA (18%), y la de MI en D10S221 (gen MXI1) (14%). Los genes más dañados (sumando ambas alteraciones) fueron PTEN (27%) y MXI1 (21%).

Conclusiones.
LOH y MI a nivel de los 4 genes estudiados en 10q parecen ser poco frecuentes en la génesis de neuroblastomas. No obstante se requiere estudiar series mayores a fin de constatar si un pequeño subgrupo de neuroblastomas podría originarse a partir de este tipo de alteraciones, y beneficiarse, consecuentemente, de un tipo específico de terapia.
 Introducción
Los tumores neuroblásticos constituidos por los neuroblastomas, ganglioneuroblastomas y ganglioneuromas, son los tumores sólidos extracraneales más frecuentes en la edad pediátrica. Dentro de ellos, los neuroblastomas representan la entidad más maligna. La amplificación de N-myc, la deleción del cromosoma 1p, la diploidía o tetraploidía, así cómo la edad (mayores de 1 año) son factores de mal pronóstico. Otras alteraciones genéticas son las deleciones en 11q y 14q, la trisomía de 17q, y la expresión de receptores de neurotrofinas (1-7).
Alteraciones en el cromosoma 10 son frecuentes en algunos tipos de cáncer. La pérdida de una copia entera del cromosoma 10 se da en ciertos tumores como los de mama, cerebro, pulmón, ovario, piel y riñón (8). Además, es frecuente encontrar pérdidas alélicas a nivel de distintos loci del cromosoma 10 en dichos tumores. Parece que existen dos regiones más frecuentemente delecionadas en el cromosoma 10: una de ellas localizada en 10p15, y la otra en 10q22-qter. A nivel del cromosoma 10q se ha observado pérdidas alélicas en glioblastomas, tumores de pulmón, endometrio y próstata, entre otros (8-15).
 Material y Métodos
Material.
Se dispuso de DNA genómico extraído de 21 tumores neuroblásticos así como de sangre de cada paciente (control negativo de lesión genética)
Métodos.
Se realizó la técnica de PCR sobre DNA tumoral y DNA proveniente de sangre periférica de cada paciente para determinar la frecuencia de LOH y/o MI en 10q mediante la amplificación de los siguientes microsatélites:
o PTEN-CA: localizado en el gen PTEN.
o D10S209 y D10S587: localizados en el gen DMBT1.
o D10S214: localizado en el gen MGMT
o D10S221, D10S597: localizados en el gen MXI1.
Los productos de PCR fueron analizados en geles de acrilamida (19:1) al 15% teñidos con bromuro de etidio (0.5 μg/ml).
 Resultados
Del total de los 21 pares sangre/tumor disponibles tan sólo fueron analizables entre 11 y 15 dependiendo del microsatélite estudiado. De este modo se obtuvieron los siguientes resultados (Tabla 1, Figuras 1 y 2).
Imagen de Pérdida de heterogosidad (LOH) y/o inestabilidad de microsatélites (MI) a nivel del cromosoma 10q en tumores neuroblásticos.Zoom
Pérdida de heterocigosidad e inestabilidad de microsatélites a nivel de 10q en tumores neuroblásticos.
Imagen de Pérdida de heterogosidad (LOH) y/o inestabilidad de microsatélites (MI) a nivel del cromosoma 10q en tumores neuroblásticos.Zoom
LOH o pérdida de heterocigosidad a nivel del microsatélite D10S221 en tumores neuroblásticos.
Gel de acrilamida (19:1) al 15% teñido con bromuro de etidio (0.5 μg/ml). La muestra número 64 mostró pérdida de heterocigosidad. Se utilizaron dos marcadores de peso molecular: M1 (10bp DNA Ladder, Invitrogen) y M2 (1Kb Plus Ladder, Invitrogen) para determinar el tamaño de las bandas.
Imagen de Pérdida de heterogosidad (LOH) y/o inestabilidad de microsatélites (MI) a nivel del cromosoma 10q en tumores neuroblásticos.Zoom
MI o inestabilidad de microsatélites a nivel de D10S209 en tumores neuroblásticos.
Gel de acrilamida (19:1) al 15% teñido con bromuro de etidio (0.5 μg/ml). La muestra número 64 mostró inestabilidad de microsatélites. Se utilizaron dos marcadores de peso molecular: M1 (10bp DNA Ladder, Invitrogen) y M2 (1Kb Plus Ladder, Invitrogen) para determinar el tamaño de las bandas.
 Discusión
La pérdida de heterocigosidad (LOH) y la inestabilidad de microsatélite (MI) a nivel de los 4 genes estudiados en 10q parecen ser un tipo de alteración poco frecuente en la génesis de los tumores neuroblásticos.
 Bibliografia
1. Jaime Mora, William L. Gerald, Jing Qin and Nai-Kong V. Cheung. “Molecular Genetics of Neuroblastoma and the Implications for Clinical Management: A Review of the MSKCC Experience”. The Oncologist 6: 263-268, 2001.
2. Shimada H, Ambros IM, Dehner LP, Hata J, Joshi VV and Roald B. “Terminology and morphologic criteria of neuroblastic tumors: recommendations by the Internacional Neuroblastoma Pathology Committee”. Cancer 86(2): 349-363, 1999.
3. Francisco López-Lara Martín, Carmen González San Segundo, Juan Antonio Santos Miranda y Álvaro Sanz Rubiales. “Manual de Oncología Clínica”, 1999.
4. Jay L. Grosfeld. “Risk-based Management of Solid Tumors in Children”. The American Journal of Surgery 180: 322-327, 2000.
5. Frank Westermann and Manfred Schwab. “Genetic parameters of neuroblastomas”. Cancer Letters 184: 127-147, 2002.
6. N Bown. “Neuroblastoma tumour genetics: clinical and biological aspects”. Journal of Clinical Pathology 54: 897-910, 2001.
7. Thorner PS and Squire JA. “Molecular genetics in the diagnosis and prognosis of solid pediatric tumors”. Pediatr Dev Pathol 1: 337-365, 1998.
8. Mertens, F, et al.,Chromosomal imbalance maps of malignant solid tumors: a cytogenetic survey of 3185 neoplasms. Cancer Research 57: 2765-2780, 1997.
9. Se K Kim, et al, Identification of two distinct tumor-suppressor loci on the long arm of chromosome 10 in small cell lung cancer. Oncogene 17: 1749-1753, 1998.
10. Hironori F, et, al, Acquisition of the glioblastoma phenotype during astrocytoma progression is associated with loss of heterozygosity on 10q25-qter. Am J Pathol 155: 387-394, 1999.
11. Albarosa R, et al, Deletion Mapping of gliomas suggests the presence of two small regions for candidate tumor supresor genes in a 17-cM intervalo n chromosome 10. Am J Humm Genet 58: 1260-1267, 1996
12. Sanson M, et al, Análisis of loss of chromosome 10q, DMBT1 homozygous deletions, and PTEN mutations in oligodendrogliomas. J Neurosurg 97: 1397-1401, 2002.
13. Terada K, et al, Prognostic value of loss of heterozygosity around three candidate tumor suppressor genes on chromosome 10q in astrocytomas. Journal of Neuro-Oncology 58: 107-114, 2002.
14. Peiffer-Schneider S, et al, Mapping an endometrial cancer tumor supresor gene at 10q25 and development of a bacterial clone contig for the consensos deletion interval. Genomics 52: 9-16, 1998.
15. Mark A. Rubin, et al, 10q23.3 loss of heterozygosity is higher in lymph node-positive (pT2-3, N+) versus lymph node-negative (pT2-3, NO) prostate cancer. Hum Pathol 31: 504-508, 2000.

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